Brandi M. Macleod^1†Theodoros Ntallaris^2†Jane M. Morrell²Ingrid Hansson³Csaba Varga^4,5*

• ¹Facultad de Medicina Veterinaria, Universidad de Illinois en Urbana-Champaign, Urbana, IL, Estados Unidos
• ²Departamento de Ciencias Clínicas, Universidad Sueca de Ciencias Agrícolas, Uppsala, Suecia
• ³Departamento de Biociencias Animales, Universidad Sueca de Ciencias Agrícolas, Uppsala, Suecia
• ⁴Departamento de Patobiología, Facultad de Medicina Veterinaria, Universidad de Illinois Urbana-Champaign, Urbana, IL, Estados Unidos
• ⁵Instituto Carl R. Woese de Biología Genómica, Universidad de Illinois en Urbana-Champaign, Urbana, IL, Estados Unidos

Introducción: Evaluar los aislados bacterianos vaginales de vacas lecheras y sus patrones de resistencia antimicrobiana puede mejorar las prácticas de gestión de la salud animal y reducir el riesgo de transmisión de patógenos resistentes a antimicrobianos dentro de poblaciones animales y de animales a humanos.

Materiales y métodos: Este estudio caracterizó la composición bacteriana cultivable y los perfiles de resistencia antimicrobiana (RAM) de bacterias vaginales aisladas de vacas lecheras sanas en el Centro Sueco de Investigación Ganadera, Lövsta, Suecia. Técnicas de aprendizaje automático no supervisadas, incluyendo el agrupamiento de particionamiento alrededor de los medoides y el análisis de redes de co-ocurrencia, investigaron las coocurrencias bacterianas en la microbiota vaginal. Los aislados bacterianos se clasificaron como resistentes o de tipo silvestre basándose en los valores epidemiológicos de punto de ruptura para los diámetros de las zonas de inhibición en el método de difusión de discos definido por el Comité Europeo de Pruebas de Susceptibilidad Antimicrobiana (EUCAST).

Resultados: Un total de 127 aislados bacterianos que representan 34 especies diferentes fueron aislados de las muestras recogidas en la vagina anterior de 40 vacas. Histophilus somni, Streptococcus pluranimalium y Escherichia coli fueron las especies más prevalentes. El análisis de redes identificó comunidades microbianas distintas, revelando que S. pluranimalium y H. somni eran centrales en las interacciones microbianas dentro de la microbiota vaginal. La prueba de susceptibilidad a la difusión de discos identificó los aislados de Staphylococcus spp. (n = 10) como resistentes a la penicilina (70%), tigeciclina (50%), tetraciclina (30%) y levofloxacina (30%), y eran de tipo salvaje para ciprofloxacina y trimetoprima-sulfametoxazol. Los aislados de Streptococcus spp. (n = 18) mostraron resistencia a tetraciclina (61,11%), tigeciclina (27,78%), penicilina (22,22%), levofloxacina (11,11%) y trimetoprima-sulfametoxazol (11,11%). Los aislados de Escherichia coli (n = 11) mostraron resistencia a la ciprofloxacina (90,91%), tigeciclina (81,82%) y levofloxacina (18,18%), y eran tipo silvestre a trimetoprima-sulfametoxazol.

Conclusión: Nuestro estudio destaca la importancia de incluir bacterias comensales del tracto reproductor en los programas de monitoreo de la RAM, ya que estas especies pueden actuar como reservorios de genes de resistencia y contribuir a la propagación de la RAM en los rebaños lecheros.