Helmintiasis zoonóticas desatendidas en cánidos salvajes
Helmintiasis zoonóticas desatendidas en cánidos salvajes: nuevos conocimientos de América del Sur
Manuel Uribe1,2 
Jan Brabec3 
Jenny J. Chaparro-Gutiérrez2 
Carlos Hermosilla1- 1Centro de Investigación Biomédica Seltersberg (BFS), Instituto de Parasitología, Universidad Justus Liebig Giessen, Gießen, Alemania
- 2Grupo de Investigación CIBAV, Facultad de Medicina Veterinaria, Universidad de Antioquia, Medellín, Colombia
- 3Instituto de Parasitología, Centro de Biología de la Academia Checa de Ciencias, České Budějovice, Chequia
La amenaza mundial de las enfermedades tropicales desatendidas (ETD) constituye un problema de salud pública en los países subdesarrollados. Las helmintiasis zoonóticas son los agentes humanos más comunes de las ETD en los países en desarrollo del África subsahariana, Asia y las Américas, causando una carga mundial de morbilidad que excede la de enfermedades infecciosas más reconocidas como la malaria y la tuberculosis. Los cánidos silvestres son mamíferos bien conocidos que actúan como reservorios naturales de helmintiasis zoonótica relevante en todo el mundo, desempeñando así un papel fundamental en su epidemiología y transmisión a los humanos. Aquí evaluamos la ocurrencia de helmintos gastrointestinales zoonóticos en dos especies de cánidos silvestres neotropicales de las regiones amazónica y andina de Colombia, es decir, el perro de monte (Speothos venaticus) y el zorro cangrejero (Cerdocyon thous). Recuperamos proglótides de tenia de muestras fecales de perros de monte y las identificamos molecularmente como el linaje canino específico de Dipylidium caninum mediante el uso de secuencias del gen de la subunidad I de la citocromo c oxidasa (cox1). Además, el examen de un zorro cangrejero durante la necropsia reveló la presencia de huevos no embrionados del nematodo descuidado Lagochilascaris cf. minor, además de huevos y proglótides grávidas del cestodo Spirometra mansoni. Estos hallazgos representan el primer informe de cestodos zoonóticos relevantes, es decir, D. caninum («genotipo canino»), S. mansoni y el nematodo L. cf. minor, en perros de monte y zorros cangrejeros como huéspedes finales. La aparición de estas helmintiasis zoonóticas en especies de cánidos silvestres requiere programas de monitoreo regulares para comprender mejor la epidemiología y las rutas de transmisión de la dipilidiasis, lagoquilascariosis y esparganosis desatendidas en América del Sur.
1. Introducción
Las zoonosis representan aproximadamente el 60% de las enfermedades infecciosas humanas emergentes, y entre estas, hasta el 70% son patógenos derivados de la vida silvestre (1, 2). Además, la amenaza mundial de las enfermedades tropicales desatendidas (ETD) constituye un problema de salud pública en los países subdesarrollados del África subsahariana, Asia y las Américas. Entre las ETD, las helmintiasis zoonóticas son los patógenos humanos más comunes, causando una carga mundial de enfermedad superior a la de enfermedades infecciosas más conocidas como la malaria y la tuberculosis. A escala mundial, las infecciones por helmintos representan más del 75% de los años de vida perdidos ajustados por discapacidad. Sin embargo, muchas de ellas han caído en el olvido como enfermedades desatendidas (3, 4). Los cánidos silvestres son reservorios naturales bien conocidos de parásitos zoonóticos (5-10), que incluyen numerosas especies de helmintos y, por lo tanto, desempeñan un papel fundamental en el ciclo de vida, la epidemiología y las rutas de transmisión de infecciones humanas (11-14). Las regiones tropicales boscosas con alta riqueza de especies de mamíferos se enfrentan a la aparición de puntos críticos de enfermedades zoonóticas bajo los cambios continuos en el uso de la tierra, lo que da lugar a un mayor riesgo de transmisión de enfermedades en la interfaz humano-animal (15, 16). Los países en desarrollo de latitudes más bajas (por ejemplo, los territorios neotropicales) tienen una concentración de patógenos zoonóticos emergentes, mientras que los estudios científicos y los esfuerzos de vigilancia que se centran en este tema siguen siendo escasos (17). El conocimiento de los cestodos zoonóticos se limita a los géneros Dibothriocephalus (diphyllobothriosis), Hymenolepis y Taenia, dejando infecciones descuidadas por cestodos poco comunes como bertielliosis, dipylidiasis, equinococosis, inermicapsiferosis, raillietinosis, mesocestoidiosis y esparganosis, que rara vez se informan clínicamente y se subestiman incluso por especialistas (4, 18, 19). Los cánidos silvestres comprenden un gran grupo de carnívoros que se distribuyen por todo el mundo, a menudo viviendo muy cerca de las poblaciones humanas (20-22). Los neotrópicos albergan un total de 10 especies de cánidos silvestres con variados comportamientos, hábitats y formas (Tabla 1). El presente estudio presenta los hallazgos sobre el parásito helminto gastrointestinal en dos especies de cánidos salvajes neotropicales (NWC) altamente divergentes: el esquivo perro semiacuático diurno / crepuscular y el zorro cangrejero nocturno que habita en el suelo. Además, examinamos el papel potencial que NWC puede desempeñar como huéspedes definitivos (DH) en la transmisión y mantenimiento de helmintiasis zoonóticas desatendidas, proporcionando nuevos conocimientos sobre este problema no resuelto.
Tabla 1. Especies de cánidos silvestres existentes distribuidas en el neotrópico.
2. Materiales y métodos
2.1. Áreas de estudio y recogida de muestras
Con base en el sistema de clasificación Köppen-Geiger, las áreas de muestreo amazónicas y andinas se encontraron en selvas tropicales y veranos templados y cálidos sin climas secos, respectivamente (23). El muestreo de animales se centró en las regiones del norte de América del Sur (Figura 1) y dentro del rango de distribución de perros de monte y zorros cangrejeros en el área neotropical. El estudio actual incluyó muestras recolectadas entre 2019 y 2021 como parte de un programa nacional de conservación y monitoreo de vida silvestre llevado a cabo por veterinarios / mamólogos en Colombia. Además, los animales encontrados muertos y recolectados por los pueblos indígenas y las comunidades locales se incluyeron en el estudio. Debido al comportamiento evasivo de los perros de monte, se recolectaron especímenes de parásitos de sitios de muestreo directo en senderos que fueron monitoreados sistemáticamente por cámaras trampa. Se siguieron las características generales y morfométricas de los depósitos de carnívoros silvestres para la identificación fecal (24). Además, las pistas asociadas y el conocimiento ecológico tradicional local también se utilizaron para muestrear estos individuos esquivos, como se describió anteriormente (25, 26). Por lo tanto, las muestras fecales se recogieron lo más frescas posible. No se examinaron cadáveres de perros de monte durante el período de estudio. Sin embargo, se encontraron proglótides dispersos y segmentos de estróbilos de cestodos parcialmente deshidratados durante el examen macroscópico de heces de dos perros de monte monitoreados (n = 2) en el municipio amazónico de Puerto Santander, Colombia. La recolección de parásitos de zorros cangrejeros se llevó a cabo durante la necropsia de un animal muerto (n = 1) en el municipio andino de Ciudad Bolívar, Colombia, y en un ambiente donde se cría ganado alimentado con pastura. Las cavidades de la cabeza, torácica y abdominal se examinaron exhaustivamente para detectar la presencia de ectoparásitos y endoparásitos. Se extirpó todo el tracto gastrointestinal, el corazón, el bazo, los riñones y el tracto respiratorio y se inspeccionaron minuciosamente in situ para detectar la presencia de parásitos macroscópicos utilizando una lupa de vidrio de 40X-25 mm. Una muestra de cestodo adulto se recuperó cuidadosamente de heces frescas recolectadas de la luz intestinal después de una incisión intestinal longitudinal. Las muestras fecales se recogieron directamente del tracto gastrointestinal y se conservaron en seco hasta su examen.
Figura 1. El mapa geográfico muestra el rango de distribución histórico del perro de monte (Speothos venaticus), el zorro cangrejero (Cerdocyon thous) y la zona de mezcla donde se encuentran ambas especies. Las áreas de muestreo amazónicas (1) y andinas (2) de este estudio se muestran en rojo.
Después de la observación macroscópica de estrobilos de cestodos y proglótides libres en las heces, todas las muestras de parásitos recolectadas se manipularon con pinzas entomológicas finas, se enjuagaron suavemente, se lavaron tres veces con solución salina tamponada con fosfato (PBS) precalentada al 0,9% y posteriormente se conservaron en ~ 96% de EtOH hasta la evaluación microscópica y molecular. Se utilizaron técnicas parasitológicas estandarizadas combinadas de sedimentación-flotación y acetato de sodio-ácido acético-formalina modificadas para analizar muestras fecales de cánidos silvestres (27). Además, las proglótides grávidas obtenidas de la estrobila de la tenia zorro cangrejero fueron diseccionadas y montadas en húmedo en portaobjetos. Este método no invasivo para la recolección fecal permitió la recuperación de especímenes de cestodos adultos sin manipulación innecesaria, trampa o perturbación de estos cánidos en libertad (25, 28).
2.2. Evaluación fenotípica de especímenes de cestodos adultos
Se observaron rasgos morfológicos y taxonómicos morfométricos generales, y la identificación de la etapa del parásito se realizó bajo análisis microscópico utilizando un microscopio óptico semimotorizado Olympus BX53™ (Olympus Corporation, Tokio, Japón) con un aumento de 400 y 1.000X. La cámara digital Olympus DP74™ se utilizó para capturar fotomicrografías de huevos, estróbilos adultos y proglótides. Los parásitos se midieron utilizando el software de imagen estándar cellSens™. Además, los proglótidos de cestodos se deshidrataron en series de etanol (75, 80, 85, 90, 96 y 100%), se transfirieron a una solución fijadora (es decir, formalina, EtOH al 95%, ácido acético glacial, glicerina y agua destilada ultrapura Milli-Q; 10:25:5:10:50 partes, respectivamente), se clarificaron con lactofenol y se tiñeron con acetocarmina de Semichon. Finalmente, las proglótides se montaron en húmedo y el fluido de Berlese en portaobjetos como se describió anteriormente (29).
2.3. Filogenética molecular
La secuencia codificante completa del gen de la subunidad I de la citocromo c oxidasa (cox1) se amplificó en dos fragmentos superpuestos con los cebadores cox1 F y JB4.5, y JB3 y cox1R, respectivamente (30, 31) utilizando Phusion High-Fidelity DNA Polymerase (New England Biolabs, Inc., Ipswich, EUA) y las siguientes condiciones de ciclo: 35 ciclos de 10 s a 98°C, 15 s a 50°C (cox1 F + JB4.5) o 60°C (JB3 + cox1R), y 50 s a 72°C. Los productos de PCR se comprobaron en gel, se purificaron con exonucleasa I y fosfatasa alcalina FastAP (Thermo Fisher Scientific, Waltham, EE. UU.) y directamente con secuenciación de Sanger en SeqMe (Dobříš, República Checa). Las secuencias de genes contiguos se ensamblaron, verificaron visualmente y se recortaron a la región codificante de cox1 en Geneious Prime 2020.0.51 y depositado en GenBank con los números de acceso OR251823 y OR251823. Las secuencias resultantes se alinearon con datos de cox1 previamente publicados de especímenes de Dipylidium, además de otras especies estrechamente relacionadas utilizando el complemento de alineación traslacional L-INS-i de MAFFT (32) de Geneious. El uso de Nippotaenia chaenogobii (JQ2685509) y Nippotaenia mogurndae (ON640728) como taxones de grupos externos y la selección de representantes relevantes dentro del grupo se basaron en estimaciones filogenéticas previas, especialmente por Waeschenbach et al. (33) y Guo et al. (34). El árbol filogenético se estimó bajo el criterio de máxima verosimilitud en IQ-TREE (35). El modelo de mejor ajuste de la evolución de nucleótidos se seleccionó de acuerdo con el criterio de información de Akaike corregido en IQ-TREE (36), y los soportes nodales se estimaron ejecutando 1.000 réplicas estándar de bootstrap no paramétrico y 10.000 repeticiones de la prueba de razón de probabilidad aproximada similar a SH.
3. Resultados
3.1. Identificación morfológica y morfométrica del parásito
La identificación morfológica de los segmentos blanquecinos, planos, en forma de barril recuperados de las heces de perro de monte (Figura 2) se basó en la observación de la forma típica más larga que ancha, con cada proglótido con dos poros genitales bilaterales, uno en el centro de cada margen lateral. Las medidas medias de grávidos proglotínidos (n = 10) fueron de 12,082 mm (DE ± 0,542 mm) de longitud y 3,996 mm (DE ± 0,344 mm) de ancho. La evaluación fenotípica se corresponde bien con Dipylidium caninum s.l. (Dipylidiidae). También se observaron cápsulas de cáscara delgada (cápsulas ovígeras) que contenían huevos dentro de las proglótides grávidas (Figura 2D). En cuanto a la evaluación parasitológica del zorro cangrejero, se observaron huevos tipo ascarido no embrionados (51,21 × 51,57 μm) con cáscara gruesa de huevo y superficie gruesa con múltiples excavaciones (Figura 3A). Los rasgos morfológicos del huevo corresponden bien a Lagochilascaris minor, previamente descrito en hospedadores definitivos carnívoros salvajes sudamericanos (37, 38). Además, se detectaron estadios del parásito (es decir, adultos y huevos) de la especie difilobotriidea Spirometra mansoni. También se registró un cestodo débilmente musculoso, de tamaño mediano, de color rosado (89,73 cm de longitud) con un cuello largo y prominente. Se observó segmentación externa de la estróbila en todo el espécimen. El cestodo mostraba un escólex en forma de cuchara bien desarrollado sin bordes botriales enrollados. Los proglótidos maduros y grávidos estaban dentados, y los huevos presentaban un opérculo único claramente visible y una forma ovalada con un extremo puntiagudo (Figuras 3B-E y Video Suplementario S1). Las medidas proglótidas promedio (n = 483) fueron 454,14 μm (DE ± 207,16 μm) de longitud y 1,78 mm (DE ± 0,73 mm) de ancho. Los segmentos de estrobila de este espécimen de parásito se utilizaron previamente para la identificación molecular de S. mansoni reportada por Brabec et al. (39).
Figura 2. Proglótides de Dipylidium caninum s.l. (familia Dipylidiidae) recogidas de las heces del perro de monte amazónico (Speothos venaticus). (A) Proglótida grávida sin teñir de montaje húmedo. El cuadrado blanco indica (B) una vista ampliada lateral del poro genital. (C) Proglótides maduras teñidas con acetocarmina de Semichon; dos conjuntos de órganos genitales distribuidos simétricamente son visibles, con el parénquima testicular (T), la bolsa cirro (CP), el poro genital (GP), los ovarios (OV) y las glándulas de Mehlis (MG). (D) Primer plano del extremo proglótido ovígero en forma de semilla con cápsulas de huevo redondas a ovaladas (paquetes) con una longitud promedio de 31–50 μm y un ancho de 27–48 μm (n = 88). (E) Microfotografía del parásito que muestra detalles de uno de los dos conjuntos de órganos reproductores masculinos y femeninos. Barras de escala: (C-E) 200 μm.
Figura 3. Examen morfológico microscópico y estereomicroscópico de las etapas del parásito encontradas en las heces de un zorro cangrejero (Cerdocyon thous). (A) Huevo no embrionado de Lagochilascaris cf. minor (51,21 × 51,57 μm) con una cáscara de huevo evidente de 5,79 μm de espesor. (B) Huevos operculados de color marrón amarillento, en forma de cono, de Spirometra mansoni (61,67 × 34,97 μm). (C) S. mansoni adulto (de los Andes) con un escólex en forma de cuchara y color rosado característico debido a la presencia de vitamina B12 del huésped. (D) Fotografía en primer plano de proglótides grávidas serradas (punta de flecha roja); Un poro genital está indicado por la punta de flecha negra. (E) Segmento estróbilo montado entero que muestra el útero en espiral ubicado centralmente (punta de flecha blanca).
3.2. Caracterización molecular de Dipylidium caninum
Los segmentos de Strobila aislados de dos muestras fecales de perros andinos recolectadas por separado se caracterizaron molecularmente mediante la secuenciación de cox1. El análisis filogenético de máxima verosimilitud confirmó la identificación de la especie como D. caninum, colocando ambos especímenes en la base de un grupo bien definido compuesto exclusivamente por D. representantes del caninum (Figura 4). El linaje de los D. El grupo caninum consiste en dos subgrupos genéticamente diferenciados que corresponden a los genotipos específicos caninos y felinos de D descritos anteriormente. caninum (40). Dentro de estos, cinco representantes de genotipo específicos caninos formaron un conjunto de especímenes relativamente basal, no monofilético, estadísticamente no soportado, mientras que el genotipo específico felino representado por dos especímenes (MG587892 y OK523385) formó un linaje interno relativamente derivado y bien respaldado. Los aislados de perro de monte andino se agrupan basalmente dentro de los representantes del genotipo canino específico (Figura 4).
Figura 4. Posición filogenética de aislados de Dipylidium caninum obtenidos de dos huéspedes de perros de monte amazónicos. Árbol de máxima verosimilitud de IQ-TREE basado en secuencias casi completas (1.563 pb) del gen cox1 analizadas como una sola partición utilizando el modelo TIM + F + R5. Los valores nodales muestran valores de prueba de razón de verosimilitud aproximada similares a SH (10.000 repeticiones) y soportes de bootstrap no paramétricos estándar (1.000 repeticiones). Los especímenes recién caracterizados se muestran en negrita. Las accesiones de GenBank se muestran después de los nombres de taxones. La barra de escala de longitud de rama indica el número de sustituciones por sitio.
4. Discusión
En un mundo cada vez más globalizado, los factores antropogénicos han intensificado la interfaz humano-vida silvestre, aumentando así el riesgo de propagación de enfermedades, reducción de la biodiversidad y colapso de la red alimentaria (41–43). Entre los carnívoros, solo el 54,3% del área de distribución mundial de las especies comprende hábitats de alta calidad debido a la fragmentación del paisaje y la pérdida de conectividad (44). Hoy en día, la vigilancia de las enfermedades infecciosas derivadas de la vida silvestre es imprescindible para comprender mejor el impacto de las enfermedades en las poblaciones, la ecoepidemiología y la conservación de la biodiversidad (45-47). Como ya se ha dicho, los cánidos salvajes sinantrópicos también han sido reportados como reservorios naturales de nuevos parásitos helmintos (48-50).
Los estudios parasitológicos de los perros de monte todavía son limitados debido a su naturaleza esquiva y comportamiento crepuscular, y por lo tanto siguen siendo una de las especies de cánidos salvajes menos conocidas. No obstante, el agente causal de la equinococosis humana poliquística crónica (es decir, Echinococcus vogeli) se describió por primera vez en 1972 en un perro salvaje capturado en América del Sur (51, 52). Además, se han reportado otros parásitos zoonóticos relevantes como Toxocara canis, Lagochilascaris sp. y Spirometra sp. en perros silvestres junto con las ocurrencias de Spirocerca lupi, Ancylostoma caninum, Taenia sp. y el apicomplejo Cystoisospora caninum (53, 54). Además, parásitos como Dioctophyme renale, Dirofilaria immitis, Neospora caninum, Rangelia vitalii, los coccidios formadores de quistes Hammondia heydorni y los parásitos zoonóticos Angiostrongylus cantonensis, Dipylidium caninum, Leishmania infantum (sin. chagasi), Toxoplasma gondii y varias garrapatas importantes para el zorro cangrejero (55-63). Por lo tanto, ambas especies de NWC pueden contribuir al mantenimiento ambiental y la transmisión de parasitosis humanas y animales domésticos. Dada la falta de información sobre la aparición y distribución de helmintiasis de preocupación para la salud pública, como la dipilidiasis, la lagoquillascariosis y la esparganosis, los resultados presentados aquí colectivamente proporcionan nuevos conocimientos sobre el potencial de NWC en la aparición y transmisión de enfermedades infecciosas zoonóticas. Aquí, realizamos con éxito la identificación de helmintos zoonóticos descuidados albergados por perros de monte y zorros cangrejeros.
La ocurrencia mundial de D. Caninum S.L. en perros y gatos domésticos está bien documentada, al igual que la dipilidiasis humana, especialmente en niños pequeños (64-68). Los seres humanos se infectan por la ingestión accidental de D. huéspedes intermedios portadores de caninum-cisticercoides (IH), más comúnmente pulgas o piojos masticadores (69, 70). Basado en técnicas moleculares que permiten la diferenciación de especies crípticas y linajes genéticos ocultos, dos linajes genéticamente distintos, es decir, los llamados D. caninum canine y D. Los genotipos felinos de Caninum, han sido propuestos dentro del género (40, 71). En contraste con la dipilidiasis humana, D. Las infecciones por caninum rara vez producen manifestaciones clínicas en cánidos o félidos. No obstante, los animales que frecuentemente portan D. Los HI infectados con caninum contribuyen a la transmisión del parásito humano (72, 73). Los carnívoros salvajes como los dingos (Canis dingo), los chacales dorados (Canis aureus), los jaguares (Panthera onca), los zorros rojos (Vulpes vulpes) y las hienas manchadas (Crocuta crocuta) son huéspedes naturales silvestres y, por lo tanto, esenciales para el mantenimiento del ciclo de vida del parásito (72, 74-77). Las infecciones por Dipylidium caninum en poblaciones de zorros cangrejeros se han sugerido como una posible consecuencia de la expansión antropogénica en los hábitats naturales de los huéspedes silvestres (60). Un estudio realizado en la región rural de alta montaña de Colombia reportó la ocurrencia de D. caninum con una prevalencia estimada del 20% (DE ± 8,7%) en poblaciones de perros itinerantes y peridomésticos (78). En Colombia, el parásito solo se ha reportado previamente en humanos y huéspedes domésticos (79). Por lo tanto, hasta donde sabemos, los resultados presentados aquí amplían el rango de distribución geográfica de la dipilidiasis de la vida silvestre a las regiones panamazónicas y del norte de los Andes, proporcionando el primer registro de huésped para perros de monte. Adicionalmente, establecemos aquí que las proglótides de cestodos analizadas de perros de monte corresponden a la D. El genotipo canino del canino, que ocurre con mayor frecuencia en los cánidos, tiene una prepermeabilidad más corta y tiene una vida útil más larga que la D. Genotipo felino Caninum (40).
La detección del género de nematodos ascáridos Lagochilascaris plantea problemas de salud pública ya que la lagoquilascariosis humana, principalmente debido a L. minor, sigue siendo una enfermedad zoonótica extremadamente desatendida del Neotrópico. Los huéspedes definitivos son carnívoros (es decir, cánidos y félidos) portadores de adultos intestinales que arrojan huevos similares a los ascáridos altamente resistentes con una cáscara de huevo gruesa y áspera (37, 80). Los seres humanos adquieren lagoquilascariosis a través de la ingestión de roedores infectados IH (por ejemplo, agutíes, ratones, ratas) que contienen larvas de tercera etapa (L3), pero también hay evidencia de que los seres humanos podrían infectarse después de la ingestión de huevos embrionados de Lagochilascaris (81). Hasta el momento, se han registrado más de 100 casos humanos de lagoquilascariosis en las Américas (80). Se han documentado tres casos de lagoquilascariosis humana en las regiones del Caribe / Pacífico y la Amazonía de Colombia (82, 83). En cualquier caso, el presente estudio constituye el primer informe no humano de este parásito en Colombia. Debido a que la cantidad de ADN obtenida de los huevos aislados de Lagochilascaris cf. minor era extremadamente baja y mostraba una degradación parcial, el análisis filogenético posterior no fue factible. No obstante, debe recomendarse la vigilancia de la lagoquilascariosis humana por parte de las autoridades locales de salud pública.
La esparganosis distribuida a nivel mundial es una enfermedad zoonótica desatendida transmitida por los alimentos y el agua causada por la infección con cestodos del género Spirometra (Diphyllobothriidea), que se informa con frecuencia en numerosas especies de vida silvestre (14, 18, 39, 84). La esparganosis se manifiesta como larvas musculares y subcutáneas (spargana), pero también se ha reportado invasión cerebral (85). El ciclo de vida del parásito heteroxenoso obligado involucra a los carnívoros, donde los adultos intestinales arrojan huevos que posteriormente se liberan al medio ambiente con heces. En el ambiente acuoso, los huevos eclosionan en coracidia, que son ingeridos por los copépodos como el primer IH en el que se desarrolla una larva procercoide. Estas larvas son infecciosas para el segundo tetrápodo IH (por ejemplo, ranas, serpientes y aves), donde tiene lugar la maduración en larvas plerocercoides (86). Los seres humanos se infectan al comer carne cruda de IH, usarla en cataplasmas tradicionales o beber agua que contiene copépodos infectados (87). En América del Sur, se han reportado un total de 16 casos humanos de esparganosis, uno de ellos en Colombia (87, 88). El espécimen de cestodo del zorro cangrejero morfológicamente descrito aquí fue identificado molecularmente como Spirometra mansoni, el primer reporte de la especie en América del Sur (39). Como la esparganosis sigue siendo una de las enfermedades menos estudiadas, los datos morfológicos presentados aquí respaldan los hallazgos de Brabec et al. en 2022 (39), que ampliaron efectivamente el rango de distribución de S. mansoni para el Neotrópico, y requieren una mayor investigación de la esparganosis humana.
Aquí, hemos proporcionado evidencia de importantes infecciones zoonóticas por helmintos en especies de NWC altamente divergentes. En consecuencia, la investigación del papel potencial del esquivo perro de monte semiacuático, el zorro cangrejero sinantrópico / peridoméstico y otros NWC poco estudiados en el ciclo de transmisión de estos parásitos a los humanos parece esencial. Además, se necesita urgentemente una futura investigación de ectoparásitos en diferentes taxones de piojos y pulgas (por ejemplo, Felicola subrostratus, Trichodectes canis, Archaeopsyllinae y Pulicinae) que infestan las poblaciones de carnívoros silvestres para identificar el IH que alberga cisticercoides de D. caninum y, por lo tanto, permitir la transmisión zoonótica de la dipilidiasis. Las consecuencias de las coinfecciones en la epidemiología y la aptitud del huésped requieren un mejor conocimiento de los agentes infecciosos asociados a NWC para comprender su papel en la aparición de dipilidiasis, lagoquilascariosis y esparganosis (89). Sobre la base de estos hallazgos, alentamos a que se realicen más investigaciones parasitológicas entre los NWC, específicamente con respecto a sus endo y ectoparásitos. En conclusión, un estudio parasitológico continuo de la vida silvestre es fundamental para implementar estrategias de salud pública para evitar el desbordamiento zoonótico en una red de vigilancia relacionada con patógenos.
Declaración de disponibilidad de datos
Los conjuntos de datos presentados en este estudio se pueden encontrar en repositorios en línea. Los nombres del repositorio o repositorios y los números de acceso se pueden encontrar en: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/nuccore/OR251824, OR251824; y https://www.ncbi.nlm.nih.gov/nuccore/OR251823, OR251823.
Declaración ética
El estudio en animales fue aprobado por el Comité de Ética para la Experimentación Animal (CEEA) de la Universidad de Antioquia, Colombia (AS No. 132) bajo el permiso de recolección No. 0524 de 2014 (IDB0321), los procedimientos se realizaron de acuerdo con las Directrices de la Sociedad Americana de Mamólogos para el uso de mamíferos silvestres en investigación y educación, y la Directiva de la UE 2010/63 / UE. El estudio se realizó de acuerdo con la legislación local y los requisitos institucionales.
Contribuciones del autor
MU: conceptualización, investigación, redacción y preparación de borradores originales. MU y JB: metodología, software y visualización. JB, JC-G y CH: validación. JB y MU: análisis formal. CH y JC-G: adquisición de recursos y financiación. JB, CH y JC-G: curación y redacción de datos: revisión y edición. JC-G y CH: supervisión. Todos los autores han leído y aceptado la versión publicada del manuscrito.
Financiación
El proyecto en el que se recolectaron las muestras fue financiado por el Grupo de Investigación CIBAV-Centro de Investigaciones Básicas y Aplicadas en Veterinaria (COL0153246), Universidad de Antioquia, Estrategia de Consolidación 2018-2019. La caracterización molecular de los especímenes fue financiada por la Fundación Checa de Ciencias, Proyecto No. 19-28399X. El APC fue financiado por la Universidad Justus Liebig en Giessen. Nos gustaría extender nuestro agradecimiento al Programa de becas de excelencia doctoral del bicentenario de Colombia por el apoyo financiero al estudiante de doctorado MU.
Reconocimientos
Nos gustaría agradecer a las comunidades locales nativas amazónicas de Araracuara, Amazonas, Colombia, las comunidades rurales y los ganaderos de Ciudad Bolívar.
Conflicto de intereses
Los autores declaran que la investigación se llevó a cabo en ausencia de cualquier relación comercial o financiera que pudiera interpretarse como un posible conflicto de intereses.
Nota del editor
Todas las afirmaciones expresadas en este artículo son únicamente las de los autores y no representan necesariamente las de sus organizaciones afiliadas, o las del editor, los editores y los revisores. Cualquier producto que pueda ser evaluado en este artículo, o reclamo que pueda ser hecho por su fabricante, no está garantizado ni respaldado por el editor.
Material complementario
El material complementario para este artículo se puede encontrar en línea en: https://www.frontiersin.org/articles/10.3389/fvets.2023.1235182/full#supplementary-material
Notas
1. ^http://www.geneious.com
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Palabras clave: desatendido, zoonosis, cánidos silvestres, neotrópicos, dipilidiasis, lagoquilascariosis, esparganosis
Cita: Uribe M, Brabec J, Chaparro-Gutiérrez JJ y Hermosilla C (2023) Helmintiasis zoonóticas desatendidas en cánidos salvajes: nuevos conocimientos de América del Sur. Frente. Vet. Sci. 10:1235182. doi: 10.3389/fvets.2023.1235182
Editado por:
Georgiana Deak, Universidad de Ciencias Agrícolas y Medicina Veterinaria de Cluj-Napoca, Rumania
Revisado por:
Calin Mircea Gherman, Universidad de Ciencias Agrícolas y Medicina Veterinaria de Cluj-Napoca, Rumania
Harold Salant, Universidad Hebrea de Jerusalén, Israel
Copyright © 2023 Uribe, Brabec, Chaparro-Gutiérrez y Hermosilla. Este es un artículo de acceso abierto distribuido bajo los términos de la Licencia de Atribución Creative Commons (CC BY).
*Correspondencia: Carlos Hermosilla, carlos.r.hermosilla@vetmed.uni-giessen.de
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